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Informations sur les jaunes de la vigne - Existe-t-il un traitement pour les jaunes de la vigne

Informations sur les jaunes de la vigne - Existe-t-il un traitement pour les jaunes de la vigne


Par: Jackie Carroll

La culture du raisin est un travail d'amour, mais elle se termine par de la frustration lorsque, malgré tous vos efforts, les vignes jaunissent et meurent. Dans cet article, vous apprendrez à identifier et à traiter la maladie de la jaunisse de la vigne.

Qu'est-ce que Grapevine Yellows?

Plusieurs problèmes conduisent les feuilles de vigne à jaunir, et certains d'entre eux sont réversibles. Cet article traite d'un groupe spécifique de maladies appelées jaunes de la vigne. C'est fatal, mais vous pourrez peut-être l'arrêter avant qu'il ne se propage dans votre vignoble.

De minuscules micro-organismes appelés phytoplasmes provoquent le jaunissement de la vigne. Ces petites bactéries comme les créatures n'ont pas de paroi cellulaire et ne peuvent exister qu'à l'intérieur d'une cellule végétale. Lorsque les cicadelles et les cicadelles mangent une feuille de vigne infectée, l’organisme se mélange à la salive de l’insecte. La prochaine fois que l'insecte mord une feuille de vigne, il transmet l'infection.

Informations supplémentaires sur les jaunes de la vigne

La maladie de la jaunisse de la vigne provoque des symptômes très spécifiques que vous n'aurez aucun mal à identifier:

  • Les feuilles des plantes infectées se retournent de manière à prendre une forme triangulaire.
  • Les pointes de tir meurent.
  • Les fruits en développement virent au brun et se ratatinent.
  • Les feuilles peuvent jaunir. Cela est particulièrement vrai dans les variétés de couleur claire.
  • Les feuilles deviennent coriaces et se cassent facilement.

Vous ne pouvez voir ces symptômes que sur une seule pousse, mais dans les trois ans, la vigne entière présentera des symptômes et mourra. Il est préférable d’enlever les vignes infectées afin qu’elles ne deviennent pas une source d’infection pour nourrir les insectes.

Bien que vous puissiez facilement identifier les symptômes, la maladie ne peut être confirmée que par des tests de laboratoire. Si vous souhaitez confirmer le diagnostic, votre agent de vulgarisation coopérative peut vous indiquer où envoyer le matériel végétal pour analyse.

Traitement des jaunes de la vigne

Il n'existe aucun traitement contre la jaunisse de la vigne qui puisse inverser ou guérir la maladie. Au lieu de cela, concentrez-vous sur la prévention de la propagation de la maladie. Commencez par vous débarrasser des insectes qui transmettent la maladie - cicadelles et cicadelles.

Les coccinelles, les guêpes parasites et les chrysopes vertes sont des ennemis naturels qui peuvent vous aider à les garder sous contrôle. Vous pouvez trouver des insecticides étiquetés pour une utilisation contre les cicadelles et les cicadelles dans un centre de jardinage, mais gardez à l'esprit que les insecticides réduiront également le nombre d'insectes bénéfiques. Quelle que soit la méthode que vous choisissez, vous ne pourrez jamais éliminer complètement les insectes.

Le phytoplasme responsable de la maladie de la jaunisse de la vigne a de nombreux hôtes alternatifs, y compris les feuillus, les arbres fruitiers, les vignes et les mauvaises herbes. Les hôtes alternatifs peuvent ne présenter aucun symptôme. Il est préférable de planter des vignes à au moins 100 pieds d'une zone boisée et de garder le site exempt de mauvaises herbes.

Cet article a été mis à jour pour la dernière fois le


Les feuilles de vigne brunissent!

Mes feuilles de vigne brunissent! C'était une vigne gravement négligée. Je l'ai taillé au début de février et il semblait bien pousser. Jusqu'à ce que tout d'un coup, les feuilles aient l'air terribles. Des idées sur ce que c'est et comment le combattre?
Merci d'avance!

Je pense que c'est une maladie, peut-être un champignon, mais pour être sûr, je prendrais des échantillons (bien scellés, des sacs à fermeture à glissière) à un bureau de vulgarisation ou un département de l'agriculture, s'il y en a des locaux pour vous.

Merci beaucoup! J'avais peur de ça: (. J'ai déjà perdu un abricotier à cause de ce que je crois être le feu bactérien. C'est le seul aspect du jardinage dont je n'avais aucune idée, ou à quel point il peut être difficile de faire face.

Savez-vous combien cela peut coûter?

Consulter l'un des endroits que j'ai suggérés, ou même une pépinière réputée, est gratuit.

Ils peuvent suggérer des traitements possibles, et ceux-ci coûteront quelque chose.
Souvent, le traitement peut inclure l'amélioration de la santé de la plante avec de l'engrais (petit coût, gros avantage), une irrigation par trempage en profondeur (coûte du temps et de l'eau) et une taille spécifique à la plante (sans frais, sauf si vous embauchez un spécialiste, mais tout le monde peut apprendre le moment et la technique d'élagage de diverses plantes) et le moment choisi pour minimiser les problèmes de maladies ou d'insectes.

Certains sprays peuvent également être utilisés au bon moment pour éviter que cela ne se produise l'année prochaine. Le spray peut être cher ou bon marché, ou il peut y avoir des remèdes maison simples qui pourraient fonctionner. Cela dépend du problème réel.

Avez-vous déjà compris ce que c'était?

Pour moi, cela ne ressemble pas à une maladie. Les deux maladies foliaires les plus courantes chez les raisins sont le mildiou dans les climats frais et humides et l'oïdium dans les climats chauds et secs, mais aucune de ces maladies ne ressemble à cela.

Avez-vous appliqué quelque chose d'huile à base sur les feuilles par une chaude journée ensoleillée? ou même des éclaboussures d'eau?

Que diriez-vous d'appliquer des herbicides à proximité ou sur le sol autour des raisins? L'Arizona devient parfois très chaud. pourrait être un coup de soleil?

Ce message a été modifié le 19 juil.2013 07:38


Qu'est-ce que la maladie de la jaunisse de la vigne: raisons pour lesquelles les feuilles de vigne jaunissent - Jardin

G.P. Martelli

Bien que six viroïdes aient été récupérés jusqu'à présent sur les vignes (voir tableau 3), (Sano et al., 1985 Flores et al., 1985 Semancik, Rivera-Bustamante et Goheen, 1987 Rezaian, Koltunow et Krake, 1988 Puchta, Ramm et Sanger , 1989 Semancik et Szychowski, 1990), quatre ne sont pas connus pour induire la maladie. Ces viroïdes, c'est-à-dire le viroïde stunt du houblon (HSVd), le viroïde citrus exocortis (CEVd), le viroïde de la vigne australienne (AGVd) et le viroïde de la vigne - concombre (GVd-c), ont été trouvés dans les vignes sans symptômes ou avec des symptômes de virus différents et ou des maladies de type virus. La seule maladie pour laquelle une étiologie viroïdale a été raisonnablement établie est la maladie des taches jaunes.

Les agents responsables de la maladie des taches jaunes sont les viroïdes 1 et 2 du speckle jaune de la vigne (GYSVd-1 et GYSVd-2), viroïdes avec des longueurs de chaîne de 367 et 363 nucléotides, respectivement (Koltunow et Rezaian, 1989).

DISTRIBUTION GÉOGRAPHIQUE

GYSVds peut avoir une distribution mondiale. Ils ont été trouvés dans des vignes originaires de nombreux pays différents de tous les continents (Semancik, Rivera-Bustamante et Goheen, 1987 Szychowski, Goheen et Semancik, 1988 Minafra, Martelli et Savino, 1990).

Aucun hôte naturel n'est connu autre que les espèces Vitis.

La moucheture jaune est une maladie insaisissable dont l'expression extérieure est conditionnée par des facteurs climatiques et éventuellement variétaux. Les symptômes, lorsqu'ils sont présentés, consistent en quelques à plusieurs petites taches ou taches jaune chrome éparpillées sur une partie ou la totalité de la surface de la feuille (figures 104 et 105) ou se rassemblant le long des nervures principales pour donner un motif de bandes veineuses (figure 106).

Le bandage veineux induit par GYSVd est très similaire, sinon identique, aux symptômes d'une maladie également connue sous le nom de bandage veineux (Figure 107), qui a longtemps été considéré comme faisant partie du complexe de dégénérescence en éventail (Goheen et Hewitt, 1962 ). Bien que les bandes veineuses puissent apparaître dans les vignes sans GFLV, elles sont plus souvent associées aux infections au GFLV. En fait, il a été suggéré que la présence de GFLV améliore l'expression de GYSVd sous la forme de motifs de bandes veineuses (Krake et Woodham, 1983). Une amélioration similaire peut se produire dans les vignes infectées simultanément par le virus de la mosaïque du chrome de la vigne (Figure 108). Contrairement aux décolorations jaunes induites par le GFLV, les symptômes de la tache jaune apparaissent au plus fort de l'été sur un nombre limité de feuilles matures et persistent pendant le reste de la saison de végétation. comme, par exemple, leafroll (Figure 109).

Aucun vecteur n'est connu. La dissémination naturelle se fait par inoculation mécanique à travers des outils de coupe contaminés en surface lors des opérations de gestion (taille et multiplication) par transmission par greffage: et par distribution de matériel de multiplication infecté. L'absence de symptômes dans la plupart des variétés de greffons européens et dans tous les porte-greffes américains facilite grandement la dissémination involontaire des viroïdes, ce qui rend la dispersion des viroïdes pratiquement impossible à prévenir. Aucun des viroïdes de la vigne n'est connu pour être transmis par des graines.

La détection est basée sur l'observation des symptômes sur le terrain. Il est préférable de rechercher les symptômes (en particulier les bandes veineuses) à la fin de l'été. Pour la détection de maladies dans des endroits où les symptômes ne se développent pas dans des conditions de terrain, une procédure de vente: indexation peut être utilisée. Les boutures de vigne fraîchement récoltées ou conservées au froid sont placées dans une chambre de croissance à 32 ° C sous éclairage continu (tubes fluorescents et ampoules à incandescence donnant 10000 lux au niveau de la végétation) et sont laissées à s'enraciner et à pousser pendant quatre semaines ( Parsons, 1975). Des taches chlorotiques translucides se développent le long des principales veines et des tissus interveinaux des vignes infectées par GYSVd 10 à 20 jours après le début de la croissance.

IDENTIFICATION
Indexation par transmission de greffe

Les indicateurs de la tache jaune sont les cultivars européens Mataro et Mission. Les symptômes sont similaires à ceux observés dans les vignes naturellement infectées dans le champ mais sont tout aussi erratiques. Dans la plupart des conditions d'indexation, les réponses des indicateurs ne sont pas fiables. Si des boutures LN 33 inoculées en copeaux sont immédiatement placées dans une chambre de croissance et à 32 ° C pendant trois semaines, puis transférées dans un environnement plus frais (10 à 20 ° C) sous éclairage continu à 10000 lux, elles peuvent devenir jaunes- taches foliaires vertes à jaune chrome sur quelques feuilles, qui donnent parfois un motif de bandes veineuses.

Transmission à des hôtes herbacés
On a signalé que le CYSVd-1 était mécaniquement transmissible au concombre cv. Suyo, qu'il infecte sans symptômes (Semancik, Rivera-Bustamante et Goheen, 1987). D'autres viroïdes de la vigne sont pathogènes pour la tomate cv. Rutgers (HSVd, AGVd et CEVd), concombre (HSVd, AGVd, GVd-c) et Gynurnaur aurantiaca (CEVd), dans lesquels ils induisent des symptômes visibles.

Électrophorèse sur gel de polyacrylamide (PAGE) Les bioessais ne sont pas fiables, donc PAGE est utilisé pour la détection et l'identification provisoire des GYSVds et d'autres viroïdes de la vigne. Les procédures d'extraction, de concentration et d'électrophorèse sont décrites dans la partie 111. L'identification est faite sur la base de la mobilité électrophorétique par rapport à celle des viroïdes de référence de taille connue (par exemple HSVd et CEVd).

Hybridation moléculaire
Des sondes moléculaires sur des viroïdes de la vigne ont été fabriquées et se sont révélées utiles pour une identification spécifique (Rezaian, Koltunow et Krake, 1988 Semuncik et Szychowski, 1990).

Le traitement thermique ne libère pas les explants de vigne des taches jaunes. L'assainissement est obtenu en régénérant des plantules à partir d'apex de pousses fragmentées cultivées in vitro à des températures comprises entre 20 ° C (nuit) et 27 ° C (jour) (Barlass et al., 1982) ou en cultivant des pointes de pousses de 0,1 à 0,2 mm de long à 25 à 27 ° C. Cette dernière méthode élimine également le HSVd (Duran-Vila. Juarez et Arregui, 1 988).

Barlass, M., Skene, K.G.M., Woodham, R.C. Et Krake, R.L. 1982. Régénération de vignes exemptes de virus en utilisant la culture apicale in vitro. Ann. Appl. Biol., 101: 291-295.

Duran-Vila, N., Juarez, J. et Arregui, J.M. 1988. Production de vignes sans viroïdes par culture de la pointe des pousses. Un m. J. Enol. Vitic., 39: 217-220.

Flores, R., Duran-Vila, N., Pallas, V. et Semancik, J.S. 1985. Détection de l'ARN viroïde et de type viroïde de la vigne. J. Gen. Virol., 66: 20952102.

Goheen, A.C. et Hewitt, W.B. 1962. Le baguage veineux, une nouvelle maladie virale de la vigne. Un m. J. Enol. Vitic., 13: 73-77.

Koltunow, A.M. Et Rezaian, M.A. 1989. Grapevine viroid 1 B. un nouveau membre du groupe viroïde de peau de cicatrice de pomme, contient la région terminale gauche de tomate planta macho viroid. Virology, 170: 575-575.

Krake, R.L. et Woodham, R.C. 1983. Agent moucheté jaune de la vigne impliqué dans l'étiologie de la maladie des bandes veineuses. Vitis, 22: 40-50.

Minafra, A., Martelli, G.P. Et Savino, V. 1990. Viroïdes de vignes en Italie. Vitis, 29: 173-182.

Vison, G.l. Et Parsons, J.L. 1975. Procédures d'indexation rapides pour la détection de la maladie des taches jaunes dans la vigne. Plant Dis. Rep., 59: 869-872.

Puchta, H., Ramm, K. et Sanger, H.L. 1988. Séquence nucléotidique d'un isolat viroïde de stunt de houblon du cultivar allemand de vigne "Riesling". Nucl. Acicts Res., 16: 2730.

Rezaian, M.A., Koltunow, A.M. Et Krake, L.R. 1988. Isolement de trois viroïdes et un ARN circulaire de la vigne. J. Gen. Virol., 69: 413422.

Sano, T., Uyeda, I., Shikata, E., Meshi, T., Ohno, T. et Okado, Y. 1985. Un ARN de type viroïde isolé de la vigne a une homologie de séquence élevée avec le viroïde de stunt du houblon. J. Gen. Virol., 66: 333338.

Semancik, J.S., Rivera-Bustamante, R. et Goheen, A.C. 1987. Occurrence répandue d'ARN de type viroïde dans la vigne. Un m. J. Enol. Vitic., 38: 35-40.

Semancik, J.S. Et Szychowski, J.A. 1990. Propriétés comparatives des viroïdes d'origine de la vigne isolés des vignes et des hôtes alternatifs. Proc. 10e rencontre. ICVG, Volos, Creece, 1990, p. 270-278.

Szychowski, J., Goheen, A.C. et Semancik, J.S. 1988. Transmission mécanique et réservoirs de porte-greffes en tant que facteurs de la distribution généralisée des viroïdes dans la vigne. Un m. J. Enol. Vitic., 39: 213-216.

Taylor, R.H. et Woodham, R.C. 1972. Tache jaune de la vigne: une maladie transmissible par greffe nouvellement reconnue de Vitis. Aust. J. Agric. Res., 23: 447-452.

Résumé: détection des taches jaunes

TRANSMISSION DE LA GREFFE
Indicateurs

Vitis vinifera cv. Mission ou LN 33
Nombre de plantes / test
3-5 boutures enracinées
Inoculum
Copeaux de bois, bourgeons simples
Température
32 ° C pendant 3 semaines, puis 1 8-20 ° C (chambre de croissance). Dessus
25 ° C en plein champ
Symptômes
Dans LN 33, taches jaune-vert à jaune chrome et / ou bandes veineuses
À Mission, taches jaunes et / ou bandes veineuses

AUTRES TESTS
Électrophorèse séquentielle (sPAGE)
Hybridation moléculaire

G.P. Martelli

AGENT CAUSAL

L'agent causal est inconnu.

DISTRIBUTION GÉOGRAPHIQUE

Bien que connue en Italie depuis le début du siècle (Graniti, Martelli et Lamberti, 1966), la maladie d'énation a été reconnue comme un trouble spécifique par Hewitt (1954) en Californie. Il se produit dans la plupart des pays européens, en Israël, aux États-Unis, au Venezuela, en Afrique du Sud, en Nouvelle-Zélande et en Australie.

Aucun hôte alternatif n'est connu.

Les symptômes au champ comprennent un débourrement retardé, une croissance lente et touffue des pousses aux premiers stades de la végétation et la présence d'excroissances laminaires ou en forme de coupe (énations) sur la face inférieure des huit à dix feuilles à la base de la pousse (Figures 110 et 111). Les feuilles avec énations sont déformées et profondément laciniées, et les pousses sont diversement déformées et parfois fissurées dans les entre-nœuds basaux. Les symptômes sont erratiques et ne se reproduisent pas chaque année sur les mêmes vignes.

Aucun vecteur n'est connu. La propagation se fait par le matériel de propagande, qui perpétue la maladie.

Les vignes fortement symptomatiques sont facilement détectées sur le terrain, même à distance, aux premiers stades de la végétation, en raison de la croissance compacte et buissonnante. Ces vignes portent généralement des énations foliaires exceptionnelles qui rendent la maladie visible. La recherche des symptômes en été n'est pas recommandée car les vignes reprennent leur croissance et leur vigueur normales et les feuilles à énation tombent prématurément.

La seule méthode disponible est la transmission par greffage à l'indicateur LN 33 (Martelli et al., 1966). L'indexation, cependant, est très insatisfaisante. L'apparition des symptômes est lente (cela peut prendre jusqu'à trois ans) et se produit à un taux dépassant rarement 20 pour cent. Les symptômes consistent en le développement d'énations sur la face inférieure de quelques feuilles de l'indicateur (Figure 112). Les symptômes doivent être lus lorsque les pousses mesurent 15 à 20 cm de long, car les énations ne se produisent plus en été et ont tendance à disparaître des feuilles qui les portent.

Aucune information n'est disponible.

Graniti, A., Martelli, G.P. Et Lamberti, F. 1966. Maladie d'énation de la vigne en Italie. Proc. Int. Conf: Virus Vectors Vivaces Hosts and Vitis, 1965, p. 293-306. Div. Agric. Sci .. Univ. Californie, Davis.

Hewitt, W.B. 1954. Certains virus et maladies apparentées à des virus de la vigne. Californie: Dept. Agric. Bull., 39: 47-64.

Martelli G.P., Graniti, A., Lamberti, F. et Quacquarelli, A. 1966. Trasmissione perinnesto della malattia delle enazioni. Phytopathol. Mediterr., 5: 122-124.

Résumé: détection d'énation

TRANSMISSION DE LA GREFFE
Indicateurs

LN 33 ou Vitis vinifera CV.
Italie
Nbre de plantes / test
3-5 boutures enracinées
Inoculum
Bourgeons simples, bâtonnets de bourgeons
Température
Conditions Fieid
Symptômes
Enations et déformation des feuilles 1 à 3 ans après la greffe

G.P. Martelli

AGENT CAUSAL

L'agent causal de la nécrose veineuse est inconnu.

DISTRIBUTION GÉOGRAPHIQUE

La maladie a été identifiée pour la première fois en France par Legin et Vuittenez (1973). Elle est maintenant enregistrée dans la plupart des pays européens et méditerranéens, où elle a souvent un niveau d'incidence élevé (Credi, Babini et Canova, 1985 Savino, Boscia et Martelli, 1985), et sa distribution est probablement beaucoup plus large.

Aucun hôte alternatif n'est connu.

Il n'y a aucun symptôme de terrain. La maladie est latente dans tous les cultivars de vigne européens et dans la plupart des espèces de porte-greffes et hybrides américains.

Aucun vecteur n'est connu. La propagation se fait par le matériel de multiplication infecté.

Aucune détection au champ n'est possible en raison de l'absence de symptômes dans les vignes atteintes.

Le greffage est fait pour Vitis rupestris x Vitis berlandieri 110 R. Les symptômes consistent en une nécrose des veinules sous le limbe des feuilles (Figure 113). Les réactions nécrotiques se développent d'abord dans les feuilles à la base des pousses, puis, à mesure que les pousses se développent, sur les feuilles plus jeunes. Avec le temps, des taches nécrotiques apparaissent également sur la face supérieure du limbe. Des souches sévères peuvent provoquer une nécrose des vrilles et un dépérissement des pousses vertes. Il s'ensuit un arrêt presque complet de la croissance et l'indicateur peut mourir. Au champ ou en serre, les symptômes apparaissent six à huit semaines après l'inoculation, mais des souches légères peuvent induire des réactions positives l'année suivant la greffe. Les symptômes sont clairement visibles, persistent tout au long de la saison végétative et sont facilement enregistrés. La lecture des symptômes doit être effectuée huit à dix semaines après l'inoculation.

Un traitement thermique à 38 ° C pendant pas moins de 60 jours, l'enlèvement et l'enracinement sous brouillard de bouts de pousses de 0,5 cm de long éliminent la maladie d'environ 65 pour cent des explants (Saving, Boscia et Martelli, 1985).

Credi, R., Babini, A.R. Et Canova, A. 1985. Apparition de nécrose veineuse de la vigne dans la région d'Émilie-Romagne (nord de l'Italie). Phytopathol. Mediterr., 24: 17-23.

Legin, R. et Vuittenez, A. 1973. Comparaison des symptômes et transmission par greffage d'une mosaïque nervaire de Vitis vinifera, de la marbrure de V. rupestris et d'une affection nécrotique de l'hybride Rup-Ber 110 R. Rile. Patol. Veg., 9 (suppl.): 57-63.

Savino, V., Boscia, D. et Martelli, G.P. 1985. Incidence de certaines maladies virales transmissibles par greffe de la vigne dans des stocks sélectionnés visuellement et traités thermiquement du sud de l'Italie. Phytopathol. Mediterr., 24: 204-207.

Résumé: détection de la nécrose veineuse

TRANSMISSION DE LA GREFFE
Indicateur

Vitis hybride américaine 110 R
Nbre de plantes / test
3-5 boutures enracinées
Inoculum
Copeaux de bois, bourgeons simples, bâtonnets de bourgeons, pointes de pousses
Température
26 ° C (greffage vert)
Symptômes
Nécrose des veinules, retard de croissance et nécrose des extrémités des pousses

G.P. Martelli

Ces maladies sont causées par des agents étiologiques indéterminés mais possiblement distincts (Woodham et Krake, 1983). Ils sont traités ensemble ici à des fins pratiques en raison de la similitude de leurs symptômes.

Le ou les agents causaux sont inconnus. Une étiologie viroïde a été suggérée pour la marbrure d'été en raison de l'influence des températures élevées sur l'expression des symptômes (Woodham et Krake, 1983).

DISTRIBUTION GÉOGRAPHIQUE

La mosaïque veineuse, identifiée pour la première fois en France (Legin et Vuittenez, 1973), est répandue dans toute l'Europe et la Méditerranée. La marbrure d'été a été enregistrée en Australie (Krake et Woodham, 1978), mais on ne sait pas si elle est ou non limitée à ce pays.

Aucun hôte alternatif n'est connu.

La mosaïque veineuse est une maladie semi-latente, car elle n'apparaît pas systématiquement dans les vignes atteintes, qu'il s'agisse de variétés de greffons européens ou de porte-greffes américains. Les symptômes caractéristiques consistent en des décolorations vert pâle des tissus adjacents aux veines principales, produisant un effet de plumage ou de bandes (figures 114 et 115). La taille et la vigueur des vignes peuvent être affectées. Les symptômes foliaires induits par la marbrure d'été sont très similaires. Les symptômes des deux maladies apparaissent en été et persistent tout au long de l'automne, parfois ils peuvent être plus évidents dans les vignes cultivées en serre que sur le terrain.

Aucun vecteur n'est connu. La propagation se fait par le matériel de multiplication infecté.

La détection sur le terrain de la mosaïque veineuse n'est pas toujours possible en raison de la semi-latence de la maladie. Aussi, lorsqu'ils sont montrés, les symptômes peuvent échapper à l'observation en raison de leur douceur et de leur distribution irrégulière dans les vignes.

Le principal indicateur de la mosaïque veineuse est Vitis riparia Gloire de Montpellier, qui réagit avec des taches chlorotiques et une mosaïque verte le long des nervures (Figure 116), des malformations du limbe des feuilles et des nécroses occasionnelles. Dans des conditions de serre, les symptômes apparaissent quatre à cinq semaines après l'inoculation, atteignant leur pleine expression en quelques mois. Les réponses symptomatologiques peuvent être plus lentes sur le terrain, mais elles apparaissent généralement sur la végétation la première année après le greffage. LN 33 est un autre indicateur de la mosaïque veineuse, réagissant avec des bandes veineuses vert pâle à jaunâtre.

La marbrure d'été n'induit pas de symptômes chez V. riparia ou LN 33 (Woodham et Krake, 1983). De bons indicateurs sont les cultivars européens Sideritis, Cabernet franc et Mission, qui présentent un plumage veineux et des bandes veineuses vert pâle à jaunâtre typiques. Les symptômes se développent à la fois en serre et au champ dans la végétation de la première année de vignes inoculées.

L'absence de marbrure d'été a été obtenue en régénérant des vignes à partir d'apex de pousses fragmentées cultivées in vitro à des températures comprises entre 20 ° C (nuit) et 27 ° C (jour) ou à une température continue de 35 ° C (Barlass et al., 1982).

Barlass, M., Skene, K.G.M., Woodham, R.C. Et Krake, L.R. 1982. Régénération de vignes exemptes de virus en utilisant la culture apicale in vitro. Ann. Appl. Biol., 101: 291-295.

Krake, L.R. Et Woodham, R.C. 1978. Marbrure veineuse de la vigne, une nouvelle maladie transmissible du greffon. Vitis, 17: 266-270.

Legin, R. et Vuittenez, A. 1973. Comparaison des symptômes et transmission par greffage d'une mosaïque nervaire de Vitis vinifera, de la marbrure de V. rupestris et d'une affection nécrotique des nerfs de l'hybride Rup-ber 110 R. Riv. Patol. Veg., 9 (suppl.): 57-63.

Woodham, R.C. Et Krake, L.R. 1983. Une comparaison des maladies de la marbrure d'été de la vigne et de la mosaïque veineuse. Vitis, 22: 247-252.

Résumé: mosaïque veineuse et détection des marbrures estivales

TRANSMISSION DE LA GREFFE
Indicateurs

Vitis riparia (mosaïque veineuse), Vitis vinifera CV. Sidentis,
Cabernet franc (marbrures d'été)
Nombre de plantes / test
3-5 boutures enracinées
Inoculum
Copeaux de bois, bourgeons simples, bâtonnets de bourgeons, pointes de pousse
Température
22 ° C (greffage vert) ou conditions de terrain
Symptômes
Taches chlorotiques et mosaïque verte le long des nervures, déformation des feuilles en 4-6 semaines

L'agent causal est inconnu.

DISTRIBUTION GÉOGRAPHIQUE

La mosaïque d'astéroïdes a été identifiée pour la première fois par Hewitt et Goheen (1959) en Californie et plus récemment en Grèce (P.E. Kyriakopoulou, communication personnelle).

Aucun hôte alternatif n'est connu.

Des taches translucides en forme d'étoile et des veines latérales fusionnées centrées entre les nervures primaires du limbe sont présentes sur les feuilles. Les feuilles sont également asymétriques et froissées (Figure 117). Les vignes malades sont faibles et portent peu ou pas de fruits.

Aucun vecteur n'est connu. La propagation se fait par le matériel de multiplication infecté.

Les vignes infectées sont symptomatiques et peuvent être identifiées sur le terrain.

Quatre à huit semaines après l'inoculation par greffe de Vitis rupestris St George, d'étroites bandes jaune crème se développent sur les nervures principales des feuilles (Figure 118). Les feuilles sont déformées et petites (Hewitt et al., 1962).

Aucune information n'est disponible.

Hewitt, W.B. Et Goheen, A.C. 1959. Mosaïque d'astéroïdes de vignes en Californie. Phytopathologie, 49: 541.

Hewitt, W.B., Goheen, A.C., Raski, D.J. Et Gooding, G.V. 1962. Etudes sur les maladies virales et pseudo-virales de la vigne en Californie. Vitis, 3: 57-83.

Résumé: détection de la mosaïque d'astéroïdes

TRANSMISSION DE LA GREFFE
Indicateur
Vitis rupestris saint George
Nombre de plantes / test
3-5 boutures enracinées
Inoculum
Copeaux de bois, bourgeons simples, bâtonnets de bourgeons
Température
Conditions sur le terrain
Symptômes
Bandes jaune crème le long des nervures de l'indicateur et déformation des feuilles en 6-8 semaines

A. Caudwell et G.P. Martelli

La flavescence dorée (FD) est causée par un organisme de type mycoplasme (MLO)

DISTRIBUTION GÉOGRAPHIQUE

La maladie a été signalée pour la première fois en 1954 dans le sud-ouest de la France (Armagnac), d'où elle s'est propagée à d'autres districts viticoles du sud de la France continentale, de la Corse et du nord de l'Italie (Caudwell et Larrue, 1986). Région des lacs des États-Unis, le berceau de son vecteur, où une maladie similaire survient à Vitis vinifera (Caudwell et Dalmasso, 1985 Pearson et al., 1985).

Aucun hôte naturel autre que la vigne n'est connu.

Les symptômes apparaissent généralement à la fin du printemps. La croissance peut être réduite et les entre-nœuds sont raccourcis. Les feuilles ont des bords roulés vers le bas et les pousses peuvent présenter un état tombant en raison de la maturation irrégulière du bois (figure 119) et du manque de fibres de phloème. Au fur et à mesure que la saison avance, la sévérité des symptômes augmente: le roulement des feuilles devient plus intense et les limbes se décolorent, virant au jaune chez les cultivars à baies blanches (figures 120 et 121) ou rouges chez les cultivars à baies rouges (figures 122 et 123) . Une nécrose le long des veines principales peut se développer en automne. Les entre-nœuds peuvent présenter des pustules noires (figure 124) et parfois une division longitudinale de l'écorce. La récolte est très réduite. Les inflorescences peuvent se dessécher dès l'apparition des premiers symptômes. Si des grappes se forment, les baies se fanent et se dessèchent ou tombent au moindre tremblement de la vigne. Certaines vignes atteintes meurent, généralement l'année suivant l'infection. Les survivants se rétablissent naturellement et ne présentent aucun symptôme à moins d'être à nouveau infectés. Les espèces sauvages d'Amérique Vitis sont infectées sans présenter de symptômes.

La maladie est transmise dans la nature par Scaphoides titanus (= Scaphoideus littoralis), une espèce de cicadelle strictement ampélophage (Figures 125 et 126) qui prospère en Europe dans le sud de la France, la Corse, le sud de la Suisse et le nord de l'Italie. Cette cicadelle pond ses œufs dans l'écorce d'un bois de vigne âgé de deux ans et a cinq stades larvaires et une seule génération par an. La propagation locale est effectivement accomplie par le vecteur, tandis que la dissémination à longue distance se fait par le biais de matériel de propagation infecté.

La détection est basée sur l'observation des symptômes sur le terrain en été ou en automne.

IDENTIFICATION
Indexation par transmission de greffe

L'indicateur le plus sensible est la variété hybride Baco 22A (Noah x Folle blanche). La greffe de bourgeon et de fente convient toutes deux à l'inoculation. Les indicateurs greffés montrent des symptômes dans les deux à trois mois. Les symptômes sont les mêmes que ceux présentés par les plantes naturellement infectées dans le champ, c'est-à-dire le rabougrissement et le roulement vers le bas et le jaunissement des feuilles. Aramon, Chardonnay, Sangiovese et Alicante Bouchet sont d'autres cultivars sensibles qui peuvent également être utilisés comme indicateurs.

Transmission par vecteurs

Les adultes et les larves de S. titanus transmettent facilement l'agent pathogène à la fève (Vicia faba) cv. Aria dans des conditions de serre. Des colonies de S. titanus peuvent être obtenues en plaçant du bois de taille de raisin oeuf de deux ans maintenu humide dans une cage autour des vignes en végétation (Caudwell et Larrue, 1977). Les cicadelles (stades de quatrième ou cinquième stade ou adultes) sont placées sur des sarments infectés pendant trois à quatre semaines, puis transférées pendant une à deux semaines sur de jeunes plants de fèves (4 à 5 cm de haut). Les fèves inoculées sont retirées de la cage et cultivées en serre avec 1 éclairage artificiel de 6 heures. Les symptômes consistant en une croissance réduite et un jaunissement et un roulement vers le haut des feuilles accompagnés d'un avortement des fleurs progressivement sévère (Figure 127) se développent au sommet de la plante en deux à trois semaines.

Euscelidius variegatus, une autre espèce de cicadelle, peut être utilisé pour transmettre l'agent causal de la maladie (FD-MLO) de la fève à la fève ainsi qu'à d'autres espèces végétales telles que Vicia, Pisum, Chrysanthernum et Lupins espèces et Vinca rosea. Depuis E. variegatus ne prospère pas sur les espèces Vitis, ses colonies sont établies et maintenues sur le maïs (Zea mais) ou fève dans des conditions contrôlées.

Pour minimiser les réactions non spécifiques lors de l'identification sérologique de FD-MLO, des antisérums contre E. variegatus FD peuvent être utilisés contre des extraits de V. faba FD. Inversement, les antisérums contre V. faba FD peuvent être utilisés contre des extraits de cicadelle FD, c'est-à-dire des extraits d'E. Variegatus infectés élevés artificiellement ou de S. titanus virulifère récoltés sur des vignes malades au champ.

ISEM. Les grilles fraîchement gazéifiées sont enrobées d'une solution à 10 g / ml de protéine A dans un tampon phosphate 0,1 M, pH 7,2. Après rinçage dans le même tampon, les grilles sont sensibilisées en flottant sur une goutte d'antisérum non dilué à E. variegatus FD, sont à nouveau rincées en tampon et sont flottées pendant 15 minutes sur une goutte d'extrait de feuille de fève infecté contenant 0,05% de Tween 20 Après un rinçage complet avec un tampon phosphate contenant 0,05% de Tween 20, les grilles sont fixées avec 1% de glutaraldéhyde, rincées à l'eau distillée et colorées négativement avec 2% de molybdate d'ammonium. Dans les échantillons infectés, les FD-MLO apparaissent sous forme de vésicules. Des résultats similaires sont obtenus en utilisant un antisérum contre V.faba FD et des extraits de cicadelles infectées.

ELISA. Les cicadelles individuelles sont écrasées dans 0,5 ml de tampon PBS et 0,1 ml de l'extrait est placé dans un puits de plaque. Des immunoglobulines de lapin anti-V faba FD sont ajoutées. Le conjugué est une IgG de chèvre anti-lapin. Si des extraits de feuilles infectées sont utilisés pour l'ELISA, les IgG utilisées sont des anti-cicadelles FD de lapin. Les anticorps polyclonaux et monoclonaux peuvent être utilisés de manière satisfaisante en ELISA (Boudon-Padieu et Larrue, 1986 Boudon-Padieu, Larrue et Caudwell, 1989 Schwartz et al., 1989).

La propagation de la maladie se fait par le matériel de propagation infecté et le vecteur. Le bois de bourgeons de vigne asymptomatique peut héberger à la fois les œufs du vecteur de la cicadelle et l'agent pathogène. Ainsi, des pépinières doivent être établies et du matériel de multiplication doit être collecté dans des zones indemnes de la maladie ou particulièrement bien protégées contre le vecteur. Le vecteur est contrôlé par: l'élimination des œufs en brûlant le bois de taille, le traitement avant le débourrement avec des huiles activées au parathion (I 500 ml d'une suspension de 3% de parathion et 78% d'huile de paraffine pour 100 litres d'eau) ou une ou deux applications chimiques contre les stades 30 et 45 jours après la première éclosion, suivi d'un autre traitement contre les adultes en août.

Les FD-MLO peuvent être éliminés du bois infecté en traitant les tiges dormantes avec de l'eau à 45 ° C pendant 3 heures ou à 50 ° C pendant 45 minutes (Caudwell et al., 1990).

Boudon-Padieu, E. et Larrue, J. 1986. Diagnostic rapide de la flavescence dorée de la vigne par le test ELISA sur cicadelle vectrice. Application à des populations naturelles de Scaphoideus littoralis Ball. Confirmation de la présence de la flavescence dorée dans les Boëches-du-Rhône. Programme. Agric. Vitic., 103: 524-526.

Boudon-Padieu, E., Larrue, J. et Caudwell, A. 1989. Détection ELISA et dot-blot de flavescence dorée-MLO dans des vecteurs de cicadelles individuels pendant la latence et l'état d'inoculation. Curr. Microbiol., 19: 357-364.

Caudwell, A. 1964. Identification d'une nouvelle maladie a virus de la vigne, la flavescence dorйe. Etude des phйnomиnes de localisation des symptфmes et de rйtablissement. Ann. Epiphytol. , 15(hors ser. l). 197 pp.

Caudwell, A. & Dalmasso, A. 1985. Epidemiology and vectors of grapevine viruses and yellows diseases. Phytopathol. Mediterr., 24: 170-176.

Caudwell, A. & Larrue, J. 1977. La production de cicadelles seines et infectieuses pour les йpreuves d'infectivitй chez les jaunisses a mollicutes des vйgйtaux. L'йlevage de Euscelis plebeja KBM et la ponte sur mousse de polyurethane. Ann. Zool. Ecol. Anim., 9: 443456.

Caudwell, A. & Larrue, J. 1986. La flavescence dorйe dans le midi de la France et dans le Bas-Rhone. Prog. Agric. Vitic., 103: 517-523.

Caudwell, A., Larrue, J., Volos, C. & Grenan, S. 1990. Hot water treatment against flavescence dorйe on dormant wood. Proc. 10th Meet. ICVG, Volos, Greece, 1990, p. 336-343.

Pearson, R.C., Pool, R.M., Gonsalves, D. & Goffinet, M.C. 1985. Occurrence of flavescence dorйe-like symptoms on "White Riesling" grapevines in New York, USA. Phytopathol. Mediterr., 24: 8287.

Schwartz, Y., Boudon-Padieu, E., Grange, J., Meignoz, R. & Caudwell, A. 1989. Obtention d'anticorps monoclonaux spйcifiques de ['agent pathogиne de type mycoplasme (MLO) de la flavescence dorйe de la vigne. Ann. Inst. Pasteur Res. Microbiol., 140: 311 -324.

Summary: flavescence dorйe detection

GRAFT TRANSMISSION
Indicators

Hybrid Baco 22A Vitis vinifera cvs Chardonnay, Aramon
No. plants/test
3-5 rooted cuttings
Inoculum
Wood chips, single buds, bud sticks
Température
Field conditions
Symptoms
Stunting, leaf yellowing and necrosis (white-berried varieties) or leaf reddening and necrosis (red-berried varieties) 2-3 months or more after inoculation

OTHER TESTS
Serology (ELISA)
Molecular hybridization

G.P. Martelli and A. Caudwell

The causal agent of grapevine yellows (bois noir, Vergilbungkrankheit, etc.) is unknown, but it is thought to be a mycoplasma-like organism (MLO). Whether one or more different MLOs are involved in the aetiology of the disease is not known.

GEOGRAPHICAL DISTRIBUTION

Syndromes comparable to bois noir, one of the grapevine yellows originally reported from France (Caudwell, 1961), have been recorded from many European and Mediterranean countries (Germany, Switzerland, southern Italy, Romania, Yugoslavia, Greece, Israel). Similar diseases occur also in Chile, Argentina and Australia (see Caudwell, 1988). Whether and to what extent these diseases are related to one another has not been established.

No alternate hosts are known, although they are likely to exist in native flora (weeds and shrubs).

Symptoms are practically the same as those of flavescence dorйe, i.e. leaf rolling, yellowing or reddening of the leaves, necrosis along the veins, incomplete wood ripening, withering of berries and drying up of bunches (Figures 128 to 131).

Visual evidence strongly indicates that the disease spreads naturally in the field. Vectors are not yet known but are likely to be leafhoppers.

Infected vines are readily identified because of the symptoms shown, especially in summer, which is the best time for field surveys.

Although cv. Chardonnay is a sensitive indicator for certain of these diseases (e.g. bois noir), it may not be totally dependable for others. Vines can be infected by grafting but not by Scaphoideus titanus. The symptomatological reactions of cv. Chardonnay tally with field symptoms. Serological tests are not available.

No information is available.

Caudwell, A. 1961. Etude sur la maladie du bois noir de la vigne: ses rapports avec la flavescence dorйe. Ann. Epiphytol., 12: 241262.

Caudwell, A. 1988. Bois noir and Vergilbungkrankheit. Other grapevine yellows. In R.C. Pearson and A.C. Coheen, eds, Compendium of grape diseases, p. 46-47. St Paul, MN, USA, Am. Phytopathol. Soc.

Summary: yellows detection

GRAFT TRANSMISSION
Indicator

Vitis vinifera cv. Chardonnay
No. plants/test
3-5 rooted cuttings
Inoculum
Wood chips, single buds, bud sticks
Température
Field conditions
Symptoms
Yellowing or reddening of the leaves and rolling of the lades followed by necrosis of the veins, usually within the first year after inoculation


Maladies

Viruses of grapes such as leaf roll and red blotch can also cause red leaves and result in reduced vine vigor, poor fruit set, reduced fruit quality, and early decline of vines. Since there is no cure available for viruses once vines are infected, the only way to cure the infected vineyard is rogueing out infected vines, and replanting with virus-tested planting materials from dependable nurseries. 3

Figure 7. Grapevine red blotch disease symptoms on Merlot. Note red pigment appearing randomly on leaf. Reddening from edges can be mistaken for K deficiency and rolling or curling at edge can be mistaken for leaf roll virus symptoms.

Grapevine leafroll disease symptoms typically appear around the onset of fruit ripening and spread as the season progresses. In red varieties, red to purplish discoloration is observed on interveinal areas of the leaf, but the veins stay green (Figure 4). In white varieties, the interveinal area will become pale green while the veins turn yellowish (Figure 5). In addition, downward cupping or curling from the edges is typical of leafroll symptoms (Figure 5). The discoloration of leaves will often develop randomly within the vine canopy. An upward or downward movement of the discoloration will not occur as it does with some of the nutrient deficiencies.

There are several viruses that can cause grapevine leafroll disease, and grapevine leafroll-associated virus-1 and -3 (GLRaV-1 and -3) can be disseminated by mealybugs or scale insects (Figure 6). Scouting for these vector insects can be done during the season (around bloom) by carefully examining the basal area of shoots and underneath the bark. Mealybugs can be managed through insecticide treatment(s), however recent research showed that even a small population of mealybugs could quickly spread grapevine leafroll disease.

Figure 8. Crown gall symptom at the graft union.

Grapevine red blotch disease is a recently recognized virus that has existed for a long time. As the name suggests, blotches of red pigment appear randomly on leaves of infected vines. It can be detected at any stage of vine growth in any part of a vine. It can easily be mistaken for potassium deficiency or leaf roll virus, especially when leaves cup or roll (Figure 7). Because of the recent recognition of the virus, there are ongoing efforts to understand how (or if) it spreads in vineyards. It is known that the red blotch virus can be disseminated through propagation and grafting with infected materials.

For the two viruses mentioned above and any other viruses, the vines will always be infected. Thus, it is recommended to obtain virus-tested materials from reputable nurseries when establishing a vineyard. Confirm that the nursery has virus-testing procedures in place such as Protocol 2010. 4 The materials from Protocol 2010 have been available since 2013, and availability has increased as more nurseries have adapted the protocol.

If you have propagated your planting materials from existing vineyards, or obtained materials from non-certified nurseries, consider sending a representative number of cuttings for virus-testing before planting. Typically, 7–8 young, matured leaves per vine, and 30–50 leaves per sample are sufficient, but communicate with the virus-testing lab (listed below) for their specific sampling protocol. When one of the vector insects and one of the grapevine leafroll-associated viruses (GRLaV-1 or -3) are present in your vineyard, management of the vector insect will be required to keep healthy vines clean of GLRaV.

Figure 9. A series of small crown gall formed under the bark of Merlot.

Crown Gall is caused by a bacterium Rhizobium ( = Agrobacterium) vitis and can be common in cool climates. Severe winters or temperature fluctuations in the early spring damage bark and vascular tissues and allow R. vitis to move into the vine cells and cause infection. 5 Typical symptoms are formation of galls on the trunk (Figure 8) however, these galls can be very small, and may be formed under the bark (Figure 9). Therefore, crown gall could be mistakenly identified as a nutrient deficiency, as red leaves resulting from the stressed vascular system are readily visible (Figure 10). Other wounding events, such as physical damage to the trunk by hitting it with equipment such as line trimmers, can also encourage the infection by R. vitis.

As with virus diseases, crown gall-infected vines are infected for life because crown gall bacterium is a systemic pathogen. Thus, management of crown gall is very difficult. Obtain clean plant materials (note: the procedure used in Protocol 2010 should considerably reduce the risk of R. vitis from the mother plant), and make sure to select varieties that suit your site. Cold tender varieties, such as Merlot and Tanat tend to have higher risk of crown gall than many others do. Moreover, stressed vines tend to be more cold tender, thus, proper viticultural practices such as site selection, crop load, and foliar disease management can lower the risk of crown gall. Having multiple trunks from above the graft union and hilling up to cover the graft unions during the winter months are other preventative strategies.


3. Downy Mildew (Plasmopara viticola)

This fungi vine disease can destroy grapes and vine vegetation. Between mid-May and late autumn, the aerial parts of the plant can become infected, particularly when the temperature is below 65°F. The symptoms are oil spots and a moldy cover or bright green spots found on the leaves. A white moldy cover is also found on the shoots and the inflorescences. The infection can also reach the berries, particularly the thriving ones, and cause them to dry out and look like raisins. They may also soften and turn a violet-brown color.

Chemical applications, such as fungicides, are used to control the fungus. Also, measures are taken to eliminate humidity and moisture around impacted plants. Drip watering systems and selective pruning to improve air circulation help to do this. Enclosed environments, such as houses or greenhouses, aid in reducing humidity and thus reducing the chance of this mildew from harming the grapevines.


Grape Leafroll Disease

Grape leafroll disease is more prevalent in vineyards than home plantings, but can have devastating effects, including the loss of 30 to 50 percent of yields. On red grape varieties, the leaves turn red. On white varieties, the leaves turn yellow. Both varieties exhibit cupping or downward turning of the leaves. The veins remain green. No chemical controls exist for leafroll disease, although treating aphids and scales through the use of pesticides may limit the spread of the disease. Plant certified disease-free plants and remove and destroy any infected plants.

  • Grape leafroll disease is more prevalent in vineyards than home plantings, but can have devastating effects, including the loss of 30 to 50 percent of yields.
  • On red grape varieties, the leaves turn red.

Questions & Answers

Question: I've tried leaving the yellow leaves on my large-leaf philodendron for several weeks now. As soon as I remove them, a new one turns yellow, as if there is some poison that needs to come out of the plant. This is also happening with my arrowhead plant. What is the cause?

Répondre: If the plants in question are actively growing, they may simply be letting go of the least productive leaf on the plant to provide resources for new growth. If these plants are struggling it is likely an issue of too little light, or it is consistently getting too dry between watering.

Question: I applied a thin coat of vaseline on both sides of a leaf. After a few days, the leaf became yellow and fell off. Why does this happen?

Répondre: Vaseline is a dense petroleum product that will severely affect transpiration if applied to foliage. If shining the leaves is the objective an actual leaf shine product is recommended, preferably one that is water soluble.

Question: If my corn plant has been overwatered, how long should I wait to water again?

Répondre: Water the plant again when the soil moisture is minimal throughout most of the pot. In order to effectively check this, you may need to get a soil probe.

Question: What could cause muted yellow spots on green leaves of cane tree ?

Répondre: Yellow or Rust-colored spots on the leaves of an otherwise healthy Dracaena can be caused by a build-up of soluble minerals in the soil this is common in older plants. It is helpful to add new soil to your plants grow pot. Check for roots that may be protruding through the drain holes on the grow pot, if any are found cut them back to the pot.

Question: My bamboo plant has only lived in water. Why are its leaves turning yellow?

Répondre: If a plant has been grown and maintained hydroponically (in water), yellowing can be caused quickly by a lack of nutrient since no soil is available. If the “Bamboo” plant in question is a Lucky Bamboo, or a Bamboo Palm, another consideration would be Spider Mite. A Spider Mite infestation will cause yellow leaves and is common to both plants mentioned above.


Voir la vidéo: Mildiou de la vigne